动物的给药、麻醉、处死术页PPT课件.ppt

1、四、实验动物的给药方法四、实验动物的给药方法实验目的：实验目的：通过实习掌握动物实验中常用的给药通过实习掌握动物实验中常用的给药方法如经口给药、皮下注射、皮内注射、腹腔注方法如经口给药、皮下注射、皮内注射、腹腔注射、肌肉注射、静脉注射。射、肌肉注射、静脉注射。实验材料：实验材料：小白鼠、大鼠小白鼠、大鼠器材为灌胃针（带圆珠头）、胶皮胃管，开口器、器材为灌胃针（带圆珠头）、胶皮胃管，开口器、注射器、针头注射器、针头(4号，号，4号半，号半，5号，号，5号半，号半，6号）、号）、镊子酒精棉球、脱脂消毒棉球、鼠，兔固定器、镊子酒精棉球、脱脂消毒棉球、鼠，兔固定器、犬，猫固定台。犬，猫固定台。注意点：

2、注意点：注意动物咬伤学生，注意注射器伤人。注意动物咬伤学生，注意注射器伤人。一、经口给药（一）口服给药 将药物添加到饲料或饮水中，让动物自由采食的方法。（二）灌胃给药 是指借助器械将药物直接灌入动物胃内的方法。注意操作时不要损伤动物。一次给药量小鼠（20-24）0.5ml，大鼠(100-199)3ml，豚鼠（250-300)4-6ml，兔(2000-3000)100-150ml。1.大鼠、小鼠、豚鼠灌胃给药 插入灌胃针时将喂管顺咽后壁轻轻往下推，其轻轻顺着上腭到达咽部,靠动物的吞咽动作使喂管顺着食管滑入小鼠的胃，插入深度约3cm。若误插入气管,动物会有挣扎。实验方法实验方法 2.2.兔、猫灌胃

3、兔、猫灌胃家兔灌胃需一个竹制或木制的开口器、一杯清水和一根用于灌胃的12号或14号导尿管。3.犬灌胃给药灌胃给药二、注射给药法二、注射给药法（1）皮下注射给药 作皮下注射常选颈背或大腿内侧的皮肤。将皮肤提起，注射针头取一钝角角度刺入皮下，把针头轻轻向左右摆动，易摆动则表示已刺入皮下，推送药液,缓慢拔出注射针,稍微用手指压片刻针刺部位,以防止药物外漏。注射量约为0.1-0.3ml/10g体重。（2）皮内注射给药 接种、过敏实验等一般作皮内注射。先将注射部位的被毛剪掉，局部常规消毒，左手拇指和食指按住皮肤使之绷紧，将针头与皮肤呈30角，紧贴皮肤皮层刺入皮内，针头的横断面朝上，针头进入皮肤浅层，再向

4、上挑起并稍刺入，将药液注入皮内。注射后皮肤出现一白色小皮丘，而皮肤上的毛孔极为明显。注射量为0.1ml/次。（3）肌肉注射给药 小鼠体积小，肌肉少，很少采用肌肉注射。当给小鼠注射不溶于水而混悬于油或其他溶剂中的药物时，采用肌肉注射。用药量不超过0.1ml/10g体重。(4)静脉注射给药 小鼠尾静脉注射：用75%酒精棉球反复擦拭尾部,以达到消毒和使尾部血管扩张的目的.以左手拇指和食指捏住鼠尾两侧,使静脉更为充盈,右手持4号针头注射器,使针头与静脉平行(小于30角),从尾巴的下1/4处进针,注射量为0.05-0.1ml/10g体重。兔耳缘静脉给药：先拔去注射部位的被毛，用手指弹动或轻揉兔耳，使静脉

5、充盈，右手持注射器连6号针头尽量从静脉的远端刺入，若有回血，推注药液无阻力，则将药液全部注入，然后拔出针头，用干棉球压迫针眼片刻。狗的静脉注射：静脉注射多选前肢内侧皮下头静脉或后肢小隐静脉注射。（5）腹腔注射 使鼠腹部朝上，鼠头略低于尾部，在下腹部靠近腹白线的两侧进行穿刺，针头到达皮下后，再稍向前进针，后以45角刺入腹腔，保持针尖不动，回抽针栓，如无回血、肠液和尿液后即可注射药液。注射量为0.1-0.2ml/10g体重。（6）脑内给药大鼠、小鼠脑内给药常用于将病原体接种于动物脑内，观察接种后的各种变化。（7）阴茎静脉注射给药对于雄性大鼠此法是较为常用的给药方法。（8）椎管内注射给药此法主要用于

6、家兔的椎管麻醉或抽取脑脊液。（9）关节腔内注射给药此法适用于家兔给药。（10）椎动脉注射给药此法适用于家兔和猫。（11）颈外静脉注射给药此法适用于犬的静脉给药。（12）蟾蜍淋巴囊内注射三、呼吸道给药三、呼吸道给药呼吸道给药主要指大鼠、呼吸道给药主要指大鼠、小鼠而言的。粉尘、气体小鼠而言的。粉尘、气体或烟雾等状态的受试物需或烟雾等状态的受试物需通过呼吸道给药。通过呼吸道给药。四、涂布给药四、涂布给药 大鼠、小鼠常采用浸尾方式经尾皮给药，大鼠、小鼠常采用浸尾方式经尾皮给药，从而定性地判定药物或毒物经皮肤的吸收从而定性地判定药物或毒物经皮肤的吸收作用。豚鼠、家兔涂布给药的部位通常为作用。豚鼠、家兔涂

7、布给药的部位通常为脊柱两侧的背部皮肤，给药部位需脱毛后脊柱两侧的背部皮肤，给药部位需脱毛后24h方可给药。方可给药。五、直肠给药和阴道给药不同种类实验动物不同给药方法一次给药能耐受的最大容量（不同种类实验动物不同给药方法一次给药能耐受的最大容量（ml）动物名称动物名称 灌胃给药灌胃给药 皮内注射皮内注射 皮下注射皮下注射 肌肉注射肌肉注射 腹腔注射腹腔注射 静脉注射静脉注射小鼠小鼠0.90.11.50.210.8大鼠大鼠5.00.15.00.524.0家兔家兔2000.2102.0510猫猫2500.2102.0510猴猴3000.3503.01020犬犬5000.31004.0-100注意：

8、一次给予药物的最大容量不可超过表中数值。注意：一次给予药物的最大容量不可超过表中数值。五、实验动物麻醉方法和途径五、实验动物麻醉方法和途径 实验动物的麻醉有局部麻醉和全身麻醉，其方法有吸入麻醉法、注射麻醉法、口服及灌胃麻醉法和针刺麻醉法。麻醉方式和麻醉剂的选用，因实验目的、动物种类、日龄和动物健康状况不同而异。实验目的：实验目的：通过对动物的麻醉，掌握最常用的吸通过对动物的麻醉，掌握最常用的吸入麻醉法和注射麻醉法以及不同种类动物、入麻醉法和注射麻醉法以及不同种类动物、不同麻醉药品的使用方法和使用剂量。不同麻醉药品的使用方法和使用剂量。实验材料：实验材料：动物：小鼠、大鼠、兔或狗动物：小鼠、大鼠

9、、兔或狗药品：药品：乙醚、戊巴比妥钠、咖啡因器材：麻醉箱或其它密闭容器如烧杯、棉球实验方法：（一）全身麻醉法 1.吸入法：吸入麻醉是将乙醚、氯仿等挥发性麻醉剂经呼吸道吸入体内而产生麻醉效果的方法。本法最适合于大、小鼠的短期操作试验的麻醉。将大鼠、小鼠或兔放入杯或缸内，将乙醚倒在棉花上，在室温下乙醚逐渐变成气体挥发，将缸内动物麻醉，动物倒下后立即取出，此时动物肌肉松弛，角膜反射迟钝，皮肤痛觉消失。2.注射麻醉法：注射麻醉是使用非挥发性全身麻醉药进行麻醉的方法。注射麻醉方法简便，麻醉时间较长，适合于需要长时间麻醉的动物实验。一般采用腹腔注射、静脉注射、肌肉注射硫喷妥钠、戊巴比妥钠、氯胺酮、水合氯醛

10、、乌拉坦等方法进行麻醉。兔、猫、犬、猪等大动物长采用静脉注射、肌肉注射的方法进行麻醉，剂量为30-35mg/kg；小鼠、大鼠、豚鼠等小动物采用腹腔注射的方法，剂量为40-50mg/kg。（二）局部麻醉法 局部麻醉是用局部麻醉药阻滞周围神经末梢或神经干、神经节、神经丛的冲动传到产生局限性麻醉区。局部麻醉的特点是动物保持清醒状态，对重要器官功能干扰轻微，麻醉并发症少，是一种比较安全的麻醉方法。局麻药按化学结构可分为酯类和酰胺类，酯类局麻药有可卡因、普鲁卡因、丁卡因和氯普鲁卡因；酰胺类局麻药有利多卡因、布比卡因、卡博卡因和地布卡因。局麻常用的方法有表面麻醉、浸润麻醉和区域阻断麻醉、脊髓麻醉等，使用最

11、多的是浸润麻醉。表面麻醉：将穿透力强的局部麻醉药直接作用于黏膜表面，使黏膜下神经末梢麻醉，可将药物配成不同浓度的溶液、凝胶和糊剂，通过滴入、喷雾、涂布和灌注等方法将其应用到眼、口腔、鼻腔、喉外耳道或尿道等黏膜处，产生麻醉。多用丁卡因和利多卡因。丁卡因常用于眼部手术，利多卡因常用于猫气管插管前的咽喉表面麻醉。浸润麻醉和区域阻滞麻醉：浸润麻醉和区域阻滞麻醉：沿手术切口线逐层注射局部麻醉药或手术区周围部位注射药物，阻滞神经纤维而达到麻醉作用，前者称为浸润麻醉，后者称为区域麻醉。适用于犬、猫皮肤撕裂窗缝合，皮肤疣及皮肤肿瘤的切除、幼犬截尾术和皮肤活组织的采集等。脊髓麻醉脊髓麻醉也叫椎管注射麻醉或脊髓硬

12、膜外麻醉。常用于剖腹产手术。（三）麻醉意外的抢救措施（三）麻醉意外的抢救措施1.针刺针刺 针刺人中穴对抢救家兔效果较好，对犬用每针刺人中穴对抢救家兔效果较好，对犬用每分钟几百次频率的脉冲电刺激膈神经效果较好。分钟几百次频率的脉冲电刺激膈神经效果较好。2.注射强心剂注射强心剂（1）肾上腺素）肾上腺素 可以静脉注射可以静脉注射0.1%肾上腺素肾上腺素1ml（0.5-1mg），必要时直接作心脏内注射。但在氟），必要时直接作心脏内注射。但在氟烷麻醉中禁用。肾上腺素能提高心肌应激性，增烷麻醉中禁用。肾上腺素能提高心肌应激性，增加心肌收缩力，加快心率，增进心肌排血量。加心肌收缩力，加快心率，增进心肌排血量

13、。（2）阿托品）阿托品 为副交感神经阻滞剂，兴奋窦房结及为副交感神经阻滞剂，兴奋窦房结及房室结，使心率加快，也有一定的复跳作用。用房室结，使心率加快，也有一定的复跳作用。用于治疗窦缓、室颤等。于治疗窦缓、室颤等。3.注射呼吸中枢兴奋药注射呼吸中枢兴奋药 可从静脉注射山梗菜碱、尼可刹米、戊四氮可从静脉注射山梗菜碱、尼可刹米、戊四氮或美解眠（与戊四氮相似），也可快速注射或美解眠（与戊四氮相似），也可快速注射高渗葡萄糖液（高渗葡萄糖液（40%）、快速输血输液或人）、快速输血输液或人工呼吸。工呼吸。掌握小鼠、大鼠、地鼠、豚鼠、兔、掌握小鼠、大鼠、地鼠、豚鼠、兔、狗、猫的处死方法，在处死动物的过程中狗、

14、猫的处死方法，在处死动物的过程中尽量减轻动物的痛苦。尽量减轻动物的痛苦。六、实验动物的处死方法六、实验动物的处死方法实验动物处死方法：1.颈椎脱臼法2.空气栓塞法3.急性失血法4.断头法5.击打法6.化学药物致死法颈椎脱臼法：用左手拇指和食指捏住小白鼠头的用左手拇指和食指捏住小白鼠头的后部，并用力下压，右手抓住鼠尾，用力向后上后部，并用力下压，右手抓住鼠尾，用力向后上方拉，即可使颈椎脱臼，瞬间死亡。方拉，即可使颈椎脱臼，瞬间死亡。空气栓塞法 向动物静脉内注入一定量的空气，使之发生向动物静脉内注入一定量的空气，使之发生栓塞而死亡。兔一般选用耳缘静脉。兔静脉内注栓塞而死亡。兔一般选用耳缘静脉。兔静

15、脉内注入入2040ml2040ml空气即可致死。空气即可致死。击打法:用器具破坏延脑或用木锤用力击其后脑部。用器具破坏延脑或用木锤用力击其后脑部。急性失血法 轻度麻醉动物后，固定于手术台上，行股轻度麻醉动物后，固定于手术台上，行股部手术。暴露股三角区，分离股动脉（向心端用部手术。暴露股三角区，分离股动脉（向心端用动脉夹夹住），并插入一根塑料管。打开动脉夹，动脉夹夹住），并插入一根塑料管。打开动脉夹，使血液流入容器内，一般动物使血液流入容器内，一般动物35min35min内即可致内即可致死。除死。除股动脉股动脉外，常用外，常用颈总动脉放血颈总动脉放血。此法处死。此法处死动物较为安静，对内脏器官无

16、损伤，使采集病理动物较为安静，对内脏器官无损伤，使采集病理切片标本，同时采集血液的一种较好的方法。兔切片标本，同时采集血液的一种较好的方法。兔可以采用此法处死。可以采用此法处死。化学药物致死法 此法适用于多种动物。可采用吸入二此法适用于多种动物。可采用吸入二氧化碳、乙醚、三氯甲烷等致死。也可注氧化碳、乙醚、三氯甲烷等致死。也可注入过量麻醉药物导致动物死亡，给药量以入过量麻醉药物导致动物死亡，给药量以深度麻醉剂量的深度麻醉剂量的5-10倍，动物在倍，动物在10-15min死亡。死亡。七、实验动物被毛的去除方法七、实验动物被毛的去除方法 动物的被毛常能影响实验操作和结果的观察，动物的被毛常能影响实

17、验操作和结果的观察，因此实验中常需去除或剪短动物的被毛。除毛的方因此实验中常需去除或剪短动物的被毛。除毛的方法有剪毛、拔毛和脱毛三种。法有剪毛、拔毛和脱毛三种。剪毛：固定动物后，用粗剪刀剪去所需部位的被毛。剪毛：固定动物后，用粗剪刀剪去所需部位的被毛。剪毛时需注意以下几点：剪毛时需注意以下几点：把剪刀贴紧皮肤剪，不可用手提起被毛，以免剪把剪刀贴紧皮肤剪，不可用手提起被毛，以免剪破皮肤；破皮肤；依次剪毛，不要乱剪；依次剪毛，不要乱剪；剪下的毛集中放在一个容器内，勿遗留在手术野剪下的毛集中放在一个容器内，勿遗留在手术野和兔台周围，以保证手术野的清洁和防止注射器等和兔台周围，以保证手术野的清洁和防止

18、注射器等夹毛。夹毛。拔毛：兔耳缘静脉注射或取血时以及给大、拔毛：兔耳缘静脉注射或取血时以及给大、小白鼠作尾静脉注射时，需用拇指、食指小白鼠作尾静脉注射时，需用拇指、食指将局部被毛拔去，以利操作。将局部被毛拔去，以利操作。脱毛：脱毛系指用化学药品脱去动物的被脱毛：脱毛系指用化学药品脱去动物的被毛，适用于无菌手术野的准备以及观察动毛，适用于无菌手术野的准备以及观察动物局部皮肤血液循环和病理变化。物局部皮肤血液循环和病理变化。常用脱毛剂的配方：常用脱毛剂的配方：硫化钠硫化钠3g、肥皂粉、肥皂粉1g，淀粉，淀粉7g，加水适量调成糊状。，加水适量调成糊状。硫化钠硫化钠8g、淀粉、淀粉7g、糖、糖4g、甘

19、油、甘油5g、硼砂、硼砂1g，加，加水水75ml。硫化钠硫化钠8g，溶于，溶于100ml水中。水中。以上脱毛剂配方适用于家兔、大白鼠、小白鼠等小动以上脱毛剂配方适用于家兔、大白鼠、小白鼠等小动物的脱毛。物的脱毛。硫化钠硫化钠10g、生石灰、生石灰15g，溶于，溶于100ml水内，此配方水内，此配方适用于狗等大动物的脱毛。适用于狗等大动物的脱毛。使用以上各种脱毛剂，都应事先剪短被毛，以节省脱使用以上各种脱毛剂，都应事先剪短被毛，以节省脱毛剂，并减少对皮肤的刺激反应，应用时用棉球蘸毛剂，并减少对皮肤的刺激反应，应用时用棉球蘸脱毛剂，在所需局部涂一薄层，脱毛剂，在所需局部涂一薄层，2-3分钟后，用温水分钟后，用温水洗去脱落的被毛，以纱布擦干局部，涂一层油脂即洗去脱落的被毛，以纱布擦干局部，涂一层油脂即可。可。