第二章植物细胞的获取课件.ppt

1、第一节外植体的选择与预处理第一节外植体的选择与预处理o成功关键：成功关键：培养基及培养条件、外植体的来源培养基及培养条件、外植体的来源。o一、外植体的选择一、外植体的选择o从生长正常，无病虫害的母株中，选择适宜的从生长正常，无病虫害的母株中，选择适宜的组织器官组织器官o1、用于直接分离细胞的外植体的选择、用于直接分离细胞的外植体的选择o原则：细胞之间粘连程度较小；原则：细胞之间粘连程度较小；o叶片最佳；叶片最佳；o限制：机械或酶伤害细胞，完整细胞较少。限制：机械或酶伤害细胞，完整细胞较少。o2 2、用于愈伤组织诱导的外植体的、用于愈伤组织诱导的外植体的选择选择o双子叶植物中常用的外植体有：双子

2、叶植物中常用的外植体有：幼胚、成熟幼胚、成熟胚、下胚轴、子叶、叶片、根等。胚、下胚轴、子叶、叶片、根等。o单子叶植物中常用的外植体有：单子叶植物中常用的外植体有：幼胚、成熟幼胚、成熟胚、细穗、花药等。胚、细穗、花药等。o无论是双子叶植物还是单子叶植物、均以无论是双子叶植物还是单子叶植物、均以幼幼胚胚诱导愈伤组织的为最佳。因为幼胚诱导的诱导愈伤组织的为最佳。因为幼胚诱导的愈伤组织质量最好，分化能力强。愈伤组织质量最好，分化能力强。o基因型的影响：不同种类及不同品种之间存基因型的影响：不同种类及不同品种之间存在差异；在差异；o同一植物，不同部位同一植物，不同部位脱分化和再分化能力脱分化和再分化能力

3、存在差异：百合：外存在差异：百合：外层内层；紫草根层内层；紫草根茎叶；苹果顶芽褐变茎叶；苹果顶芽褐变程度侧芽；兰科：程度侧芽；兰科：茎尖；茎尖；o还要考虑生产目的：还要考虑生产目的：选用植株中主要生产选用植株中主要生产所需的的次级代谢产所需的的次级代谢产物的组织和器官物的组织和器官o2 2、用于愈伤组织诱导的外植体的选择、用于愈伤组织诱导的外植体的选择o外植体的生理状态：红豆杉：新生的嫩枝；外植体的生理状态：红豆杉：新生的嫩枝；o取材季节：母株生长旺盛的季节；紫草：秋天取材季节：母株生长旺盛的季节；紫草：秋天（紫草宁合成和积累）；（紫草宁合成和积累）；o外植体大小：适当大小；脱毒率和茎尖大小及

4、成外植体大小：适当大小；脱毒率和茎尖大小及成活率之间的关系；活率之间的关系；o3 3、用于分离原生质体的外植体的选择、用于分离原生质体的外植体的选择o分离原生质体则以叶片为最好。苗龄与叶龄分离原生质体则以叶片为最好。苗龄与叶龄有关；太老不易游离，太嫩，易游离，但细有关；太老不易游离，太嫩，易游离，但细胞膜易损害；胞膜易损害；o以苗龄以苗龄151525d25d，刚展开的幼叶为最佳。，刚展开的幼叶为最佳。o无菌苗幼叶；无菌苗幼叶；o还要考虑培养目的；还要考虑培养目的；o多数情况下，需要根据实验确定；多数情况下，需要根据实验确定；o4 4、花、花粉粉材料的选择材料的选择o用作花用作花粉粉培养的亲本植

5、株的培养的亲本植株的基因型基因型、生长情况生长情况以及接以及接种时花粉所处的种时花粉所处的发育时期发育时期，对花粉植株的诱导频率都，对花粉植株的诱导频率都有直接的影响。有直接的影响。o关键选取处于合适发育期的花药，离体培养后才能启关键选取处于合适发育期的花药，离体培养后才能启动花粉发育。实践表明，从减数分裂期至双核期的花动花粉发育。实践表明，从减数分裂期至双核期的花药，均有可能诱导离体孤雄发育。药，均有可能诱导离体孤雄发育。o大多数园艺植物的花药培养，成功率最高的时期为大多数园艺植物的花药培养，成功率最高的时期为单单核期，或单核中晚期核期，或单核中晚期。o四分体小孢子单核花粉双核四分体小孢子单

6、核花粉双核花粉花粉花粉的发育时期花粉的发育时期花药培养属于器花药培养属于器官培养范畴官培养范畴花粉培养也称为小孢花粉培养也称为小孢子培养。子培养。是从花药中分离出是从花药中分离出花粉粒花粉粒,使之成为分散的或游离使之成为分散的或游离的状态的状态,通过培养使花粉粒脱分通过培养使花粉粒脱分化化,进而发育成完整植株的过程进而发育成完整植株的过程.属于细胞培养的范畴属于细胞培养的范畴1、外植体的灭菌处理、外植体的灭菌处理常用表面灭菌剂使用浓度及效果比较表常用表面灭菌剂使用浓度及效果比较表二、外植体的预处理二、外植体的预处理几种常用消毒剂的效果比较几种常用消毒剂的效果比较消毒剂消毒剂使用浓度使用浓度消毒

7、时间消毒时间效果效果残液去除难易残液去除难易次氯酸钙次氯酸钙/钠钠10105-305-30好好易易新洁尔灭新洁尔灭101020205-305-30好好易易氯化汞氯化汞0.10.11 12-102-10最好最好 最难最难过氧化氢过氧化氢101012125-155-15较好较好最易最易抗菌素抗菌素4 450mg/L50mg/L30-6030-60较好较好较难较难外植体表面灭菌过程：外植体表面灭菌过程：o选材选材刷洗、冲洗刷洗、冲洗用洗衣粉水或肥皂水浸用洗衣粉水或肥皂水浸洗并搅动洗并搅动自来水冲净洗衣粉水自来水冲净洗衣粉水 7070酒精浸泡酒精浸泡10103030秒振荡秒振荡 0.10.1升汞升汞3

8、 31010分分钟钟(表面活性剂表面活性剂)无菌水冲先无菌水冲先3 35 5次次 接种接种2 2、外植体的其他处理、外植体的其他处理o目的：目的：提高愈伤组织诱导率；促进原生质体游离。提高愈伤组织诱导率；促进原生质体游离。o方法：方法：o预培养；预培养；o暗处理；暗处理；o低温或高温处理；低温或高温处理；o萎蔫处理；萎蔫处理；o抗氧化剂处理；抗氧化剂处理；o高渗透压预处理；高渗透压预处理；o花药和花粉培养的预处理：花药和花粉培养的预处理：o最常用的方法是最常用的方法是低温冷藏低温冷藏。具体做法是将带有叶鞘的。具体做法是将带有叶鞘的穗子或花蕾用湿纱布包裹后再用塑料袋套起，放在冰穗子或花蕾用湿纱布

9、包裹后再用塑料袋套起，放在冰箱中冷藏。箱中冷藏。o不同材料对处理温度的高低有不同的要求，一般耐寒不同材料对处理温度的高低有不同的要求，一般耐寒植物比喜温可耐受较低的温度。低温处理时间视使用植物比喜温可耐受较低的温度。低温处理时间视使用的温度而定，较低的温度处理时间要短，反之则长。的温度而定，较低的温度处理时间要短，反之则长。烟草烟草7 79 9度下处理度下处理7 71414天，水稻天，水稻7 71010度下处理度下处理10101515天，大麦天，大麦3 37 7度下处理度下处理7 71414天，都可显著提高花药天，都可显著提高花药的出愈率。的出愈率。低温处理的作用：低温处理的作用：o预处理引起

10、花药、花粉内源激素发生变化，改变了小预处理引起花药、花粉内源激素发生变化，改变了小孢子（花粉粒）第一次有丝分裂的轴向发育（正常发孢子（花粉粒）第一次有丝分裂的轴向发育（正常发育时，两次有丝分裂形成三核花粉粒），产生两个相育时，两次有丝分裂形成三核花粉粒），产生两个相等核，进而形成愈伤组织或胚状体。等核，进而形成愈伤组织或胚状体。o保持高比例的强生活力花粉，同时延缓体细胞组织的保持高比例的强生活力花粉，同时延缓体细胞组织的衰老。衰老。o激发花粉产生原胚。激发花粉产生原胚。o促使细胞同步分裂。促使细胞同步分裂。技术要点技术要点第二节从外植体直接分离植物细胞第二节从外植体直接分离植物细胞o一、机械捣

11、碎法一、机械捣碎法o将外植体捣碎，然后通过过滤和离心分离细将外植体捣碎，然后通过过滤和离心分离细胞。胞。o优点：不用酶，细胞不会受到伤害；没有经优点：不用酶，细胞不会受到伤害；没有经过质壁分离，利于生理生化研究。过质壁分离，利于生理生化研究。o缺点：机械作用，细胞结构破坏大，得率低。缺点：机械作用，细胞结构破坏大，得率低。o最佳材料：叶片最佳材料：叶片o方法及步骤：方法及步骤：o第一种方法：用刀片刮叶片第一种方法：用刀片刮叶片o第二种方法：先把叶片轻轻研碎，然后通过过滤和第二种方法：先把叶片轻轻研碎，然后通过过滤和离心净化细胞。离心净化细胞。o叶片表面灭菌叶片表面灭菌切成小于切成小于1cm2的

12、小块的小块玻璃匀浆管玻璃匀浆管中匀浆中匀浆过滤（孔径分别为：过滤（孔径分别为：61 m和和38 m）低速离心，弃上清低速离心，弃上清悬浮细胞悬浮细胞细胞培养细胞培养二、酶解法二、酶解法o利用果胶酶、纤维素酶等处理，分离出具有代谢活性的细胞；该法不利用果胶酶、纤维素酶等处理，分离出具有代谢活性的细胞；该法不仅能降解中胶层，而且还能软化细胞壁。所以在用酶解法分解细胞的仅能降解中胶层，而且还能软化细胞壁。所以在用酶解法分解细胞的时候，必须对细胞给予渗透压保护。常用的渗透压保护剂是甘露醇。时候，必须对细胞给予渗透压保护。常用的渗透压保护剂是甘露醇。o首次成功：烟草叶细胞首次成功：烟草叶细胞o步骤：叶片

13、表面灭菌步骤：叶片表面灭菌撕去下表皮撕去下表皮切成切成4cm2小块小块放入酶液中放入酶液中抽抽真空真空摇床上酶解摇床上酶解每每30min更换一次酶液（第一次弃去，第二次主更换一次酶液（第一次弃去，第二次主要含海绵细胞，第三、四次主要含栅栏细胞）要含海绵细胞，第三、四次主要含栅栏细胞）收集细胞，培养基洗收集细胞，培养基洗二次后培养二次后培养o机械法和酶解法比较机械法和酶解法比较o机械法：细胞不受到酶的伤害；不用质壁分机械法：细胞不受到酶的伤害；不用质壁分离，有利于进行生理和生化研究离，有利于进行生理和生化研究 ；容易伤害；容易伤害细胞结构，获得完整细胞团或细胞数量极低；细胞结构，获得完整细胞团或

14、细胞数量极低；细胞易破。细胞易破。o酶解法：细胞受到酶的伤害；要质壁分离；酶解法：细胞受到酶的伤害；要质壁分离；细胞产量高；细胞不易破。细胞产量高；细胞不易破。第三节通过愈伤组织诱导获取植物细胞第三节通过愈伤组织诱导获取植物细胞o一、获取过程：一、获取过程：o（1 1）诱导产生愈伤组织；）诱导产生愈伤组织；o（2 2）愈伤组织反复继代，使组织不断增殖，提高愈伤组）愈伤组织反复继代，使组织不断增殖，提高愈伤组织的松散性。织的松散性。o（3 3）将愈伤组织在液体培养基中培养，建立悬浮培养物。）将愈伤组织在液体培养基中培养，建立悬浮培养物。具体方法：具体方法：用镊子或小刀分割得到植物小细胞团；液体用

15、镊子或小刀分割得到植物小细胞团；液体培养基中加入小玻璃珠，振荡培养，使其分散，再过滤培养基中加入小玻璃珠，振荡培养，使其分散，再过滤获得；适量的果胶酶可促使细胞分开。获得；适量的果胶酶可促使细胞分开。o在植物的组织培养中，从一块外植体形成典型的愈伤组在植物的组织培养中，从一块外植体形成典型的愈伤组织，大致要经历三个时期：织，大致要经历三个时期：启动期、分裂期和形成期启动期、分裂期和形成期。o启动期启动期是指细胞准备进行分裂的时期。外源植物生长素对诱导细是指细胞准备进行分裂的时期。外源植物生长素对诱导细胞开始分裂效果很好。常用的有：胞开始分裂效果很好。常用的有：2,42,4D D、萘乙酸（、萘乙

16、酸（NAANAA）、吲）、吲哚乙酸（哚乙酸（IAAIAA）、吲哚丁酸（）、吲哚丁酸（IBAIBA）等。通常使用细胞分裂素和生）等。通常使用细胞分裂素和生长素比例在长素比例在1:l1:l或是小于或是小于1 1来诱导植物愈伤组织的形成。来诱导植物愈伤组织的形成。o分裂期分裂期是指外植体细胞经过诱导以后脱分化，不断分裂、增生子是指外植体细胞经过诱导以后脱分化，不断分裂、增生子细胞的过程。分裂期愈伤组织的特点是：细胞分裂快，结构疏松，细胞的过程。分裂期愈伤组织的特点是：细胞分裂快，结构疏松，颜色浅而透明。颜色浅而透明。o分化期分化期是指在分裂的末期，细胞内开始出现一系列形态和生理上是指在分裂的末期，细

17、胞内开始出现一系列形态和生理上的变化，从而使愈伤组织内产生不同形态和功能的细胞。这些细的变化，从而使愈伤组织内产生不同形态和功能的细胞。这些细胞类型有薄壁细胞、分生细胞、色素细胞、纤维细胞等等。胞类型有薄壁细胞、分生细胞、色素细胞、纤维细胞等等。o外植体的细胞经过外植体的细胞经过启动、分裂和分化启动、分裂和分化等一系列变化，等一系列变化，形成了无序结构的愈伤组织。如果在原来的培养基上形成了无序结构的愈伤组织。如果在原来的培养基上继续培养愈伤组织，会由于培养基中营养不足或有毒继续培养愈伤组织，会由于培养基中营养不足或有毒代谢物的积累，导致愈伤组织停止生长，甚至老化变代谢物的积累，导致愈伤组织停止

18、生长，甚至老化变黑、死亡。如果要让愈伤组织继续生长增殖，必须定黑、死亡。如果要让愈伤组织继续生长增殖，必须定期地（期地（2 24 4个星期）将它们分成小块接种到新鲜的培个星期）将它们分成小块接种到新鲜的培养基上，这样愈伤组织就可以长期保持旺盛的生长。养基上，这样愈伤组织就可以长期保持旺盛的生长。即经常地继代培养。即经常地继代培养。o二、影响愈伤组织诱导的因素二、影响愈伤组织诱导的因素o1 1、外植体：细胞越成熟，脱分化越困难。、外植体：细胞越成熟，脱分化越困难。o无菌萌发的幼苗。无菌萌发的幼苗。o2 2、培养条件：、培养条件：o1 1）激素的种类及浓度：）激素的种类及浓度：o生长素：生长素：2

19、,42,4D D、IAAIAA、NAANAA；o细胞分裂素：细胞分裂素：KTKT、ZTZT、6 6BABA。o2 2）培养基的种类）培养基的种类o3 3）光照和温度）光照和温度o（21210.30.3）最佳。最佳。o4 4）NHNH4 4/NO/NO3 3-o5 5）碳源）碳源o良好的愈伤组织的条件：良好的愈伤组织的条件：o高度的胚性或再分化能力；高度的胚性或再分化能力；o容易分散，以便建立优良的悬浮细胞系和分离原容易分散，以便建立优良的悬浮细胞系和分离原生质体；生质体；o旺盛的增殖能力，以便建立大规模的无性系；旺盛的增殖能力，以便建立大规模的无性系；o继代不丧失胚性继代不丧失胚性黑暗培养下烟

20、黑暗培养下烟草的愈伤组织草的愈伤组织继代培养常见问题继代培养常见问题 o1.1.变异问题变异问题 o影响变异的因素：o基因型 o发生途径 o继代次数 o减少变异的措施：o选择变异率低的品种 o选择不容易产生变异的发生途径 o严格控制继代代数（10代以内）继代培养常见问题继代培养常见问题o2.2.玻璃化问题玻璃化问题o玻璃化现象产生的主要原因：玻璃化现象产生的主要原因：o一是通气不良；二是激素浓度太高；三是基因型；四是水分。一是通气不良；二是激素浓度太高；三是基因型；四是水分。o培养基中可利用水的含量过高，试管苗可吸收的水分太多，植物内培养基中可利用水的含量过高，试管苗可吸收的水分太多，植物内具

21、有过多的游离水具有过多的游离水 。o克服玻璃化现象的措施：克服玻璃化现象的措施：o两个两个“增加增加”：增加琼脂浓度；增加蔗糖含量；：增加琼脂浓度；增加蔗糖含量；两个两个“增强增强”：增强溶器通风；增强光照；增强溶器通风；增强光照；o两个两个“加入加入”：加入渗透剂：加入渗透剂 ；加入；加入ABAABA（脱落酸）；（脱落酸）；o一个一个“减少减少”：减少培养基氮含量。：减少培养基氮含量。第四节通过原生质体再生获取植物细胞第四节通过原生质体再生获取植物细胞o原生质体原生质体(protoplast)(protoplast)：指除去细胞壁的细胞或是：指除去细胞壁的细胞或是说一个被质膜所包围的裸露细胞

22、。说一个被质膜所包围的裸露细胞。o亚原生质体亚原生质体(subprotoplast)(subprotoplast)：在原生质体分离过：在原生质体分离过程中，有时会引起细胞内含物的断裂而形成一些较程中，有时会引起细胞内含物的断裂而形成一些较小的原生质体就叫做亚原生质体。它可以具有细胞小的原生质体就叫做亚原生质体。它可以具有细胞核或没有细胞核。核或没有细胞核。o胞质体（胞质体（cytoplastcytoplast）：不含细胞核而仅含有部分）：不含细胞核而仅含有部分细胞质的原生质体。细胞质的原生质体。第四节通过原生质体再生获取植物细胞第四节通过原生质体再生获取植物细胞o关于原生质体研究的重要成就：关

23、于原生质体研究的重要成就：o1880年，年，Hanstein首次起用原生质体一词。首次起用原生质体一词。o1960年，年，Cocking首次应用酶法制备番茄根原生首次应用酶法制备番茄根原生质体获得成功。质体获得成功。o1971年，年，Takebe 首次得到烟草叶肉原生质体培首次得到烟草叶肉原生质体培养的再生植株。养的再生植株。o1985年，年，Fujimura 第一例禾谷类作物水稻原第一例禾谷类作物水稻原生质体培养再生植株。生质体培养再生植株。o1986年，年，Spangenberg 单个原生质体培养再生植单个原生质体培养再生植株在甘蓝型油菜上获得成功。株在甘蓝型油菜上获得成功。一、一、植物原

24、生质体的材料来源植物原生质体的材料来源几乎能从植物的所有部位得到原生质体，其中以几乎能从植物的所有部位得到原生质体，其中以叶片叶片为多，为多，因为植物叶肉细胞的原生质体有下面几个优点：因为植物叶肉细胞的原生质体有下面几个优点：o1.1.取材容易，植株可来自盆栽和温室栽培，也可在试管中取材容易，植株可来自盆栽和温室栽培，也可在试管中培育无菌苗。培育无菌苗。o2.2.原生质体在生理和遗传特性上比较一致。原生质体在生理和遗传特性上比较一致。o3.3.比较容易用酶解法分离。比较容易用酶解法分离。o根尖组织根尖组织也是植物原生质体的重要来源，它可由各种植物也是植物原生质体的重要来源，它可由各种植物的种子

25、萌发后取得。的种子萌发后取得。o花粉花粉经特异酶处理也能得到原生质体，在单倍体遗传育种经特异酶处理也能得到原生质体，在单倍体遗传育种中有特殊的用途。中有特殊的用途。二、二、植物原生质体的材料来源植物原生质体的材料来源o原生质体也可以从原生质体也可以从组织培养的材料组织培养的材料中大中大量获得。由于组织培养的严格条件，使得量获得。由于组织培养的严格条件，使得材料的重复性好，实验材料可做到常年供材料的重复性好，实验材料可做到常年供应。应。o值得注意的是，在考虑分离植物原生质值得注意的是，在考虑分离植物原生质体时，既要采用容易获得原生质体的植物体时，既要采用容易获得原生质体的植物材料，但更重要的是要

26、选用易于再生完整材料，但更重要的是要选用易于再生完整植株的细胞。植株的细胞。二二.植物原生质体的分离和纯化植物原生质体的分离和纯化o(一一)原生质体的分离原生质体的分离o早在早在18921892年就有人用机械法分离原生质体。直到年就有人用机械法分离原生质体。直到19601960年，英国的科年，英国的科金金(Cocking)(Cocking)首先采用酶解法分离原生质体。首先采用酶解法分离原生质体。o酶解法有下面几个优点：酶解法有下面几个优点：o能获得大量的原生质体；能获得大量的原生质体；o条件温和，原生质体完整性好；条件温和，原生质体完整性好；o原生质体纯净度高；原生质体纯净度高；o下面以叶片和

27、悬浮培养的细胞为材料介绍分离原生质体的一般步骤。下面以叶片和悬浮培养的细胞为材料介绍分离原生质体的一般步骤。1.1.材料准备与表面灭菌材料准备与表面灭菌2.2.酶解：用镊子撕去叶子酶解：用镊子撕去叶子的下表皮后，切成的下表皮后，切成2 2厘厘米见方的小片，使去米见方的小片，使去表皮的一层朝下放入表皮的一层朝下放入酶液中处理，在酶液中处理，在25-25-2828，黑暗下酶解，黑暗下酶解3-3-4hr4hr。若采用悬浮培养。若采用悬浮培养的细胞，则采用继代的细胞，则采用继代3d3d的细胞最好，经离的细胞最好，经离心收集细胞，放入酶心收集细胞，放入酶液中置低速转床酶解液中置低速转床酶解8-12hr8

28、-12hr。(二二)原生质体的纯化原生质体的纯化 o酶解后纯化原生质体的步骤如下：酶解后纯化原生质体的步骤如下：o1.1.酶解悬浮液用酶解悬浮液用400400目的不锈钢或尼龙网过滤，以除去未目的不锈钢或尼龙网过滤，以除去未消化的碎片。消化的碎片。o2.2.将含有原生质体的酶液收集到离心管中，低速离心使将含有原生质体的酶液收集到离心管中，低速离心使原生质体沉于管底，倒掉上清液。原生质体沉于管底，倒掉上清液。o3.3.在离心管中加入适量的洗涤液，并离心。在离心管中加入适量的洗涤液，并离心。o4.4.重复上述操作三次，使酶解液充分除去，最后用原生重复上述操作三次，使酶解液充分除去，最后用原生质体培养

29、液洗涤一次。质体培养液洗涤一次。o上述的离心纯化法可细分为：上述的离心纯化法可细分为：A A沉降法；沉降法；B B漂浮法；漂浮法；C C沉降法和漂浮法结合等三种。沉降法和漂浮法结合等三种。原生质体培养基原生质体培养基分离时酶的溶剂为原生质体培养基分离时酶的溶剂为原生质体培养基甘露醇和蔗糖为渗透压调节剂甘露醇和蔗糖为渗透压调节剂在酶液中加入适量的氯化钙和磷酸二氢钾作为原生质体稳定剂，可增强质膜在酶液中加入适量的氯化钙和磷酸二氢钾作为原生质体稳定剂，可增强质膜的稳定性的稳定性酶溶剂用原生质体培养基或特殊配制酶溶剂用原生质体培养基或特殊配制(三三)原生质体的活力测定原生质体的活力测定 o一是一是目测

30、法目测法：凭借形态可识别原生质体的存活性。：凭借形态可识别原生质体的存活性。o二是采用二是采用特异的染色方法特异的染色方法来确定：来确定：o0.1%0.1%酚藏花红液染色，活的原生质体能吸收而呈红色，酚藏花红液染色，活的原生质体能吸收而呈红色，死的则无此能力；死的则无此能力；o伊文思蓝与之相反，仅死原生质体可吸收；伊文思蓝与之相反，仅死原生质体可吸收；o荧光素双醋酸酯荧光素双醋酸酯(FDA)(FDA)染色，染色，FDAFDA本身没有荧光和极性，本身没有荧光和极性，可自由渗透进出完整质膜。活的原生质体的酯酶能分可自由渗透进出完整质膜。活的原生质体的酯酶能分解解FDAFDA成为具有荧光的极性物质，

31、无活力的不产生荧成为具有荧光的极性物质，无活力的不产生荧光。光。Beforeprotoplastscanbecultureditisnecessarytotestthemforviability.三三.影响原生质体分离的几个因素影响原生质体分离的几个因素 o1.1.酶解条件：酶质量、浓度、酶解温度、酶解时间、酶酶解条件：酶质量、浓度、酶解温度、酶解时间、酶溶液的渗透压等。不同细胞细胞壁组成和结构有差异，溶液的渗透压等。不同细胞细胞壁组成和结构有差异，故酶的种类和浓度也不相同，如分离根尖细胞要有较多故酶的种类和浓度也不相同，如分离根尖细胞要有较多的果胶酶；花粉母细胞及四分体小孢子：蜗牛酶及胼胝的

32、果胶酶；花粉母细胞及四分体小孢子：蜗牛酶及胼胝质酶联合；成熟花粉细胞：果胶酶和纤维素酶。质酶联合；成熟花粉细胞：果胶酶和纤维素酶。o酶液酶液pHpH值也直接影响分离的速度和稳定性。值也直接影响分离的速度和稳定性。pHpH值低则值低则分离速度较快，而损坏的较多；分离速度较快，而损坏的较多；pHpH值高则分离速度较慢，值高则分离速度较慢，而完整性较好；故酶液的而完整性较好；故酶液的pHpH值一般为值一般为5.75.7左右。左右。三三.影响原生质体分离的几个因素影响原生质体分离的几个因素 o2.2.渗透压稳定剂种类和浓度因材料不同而有渗透压稳定剂种类和浓度因材料不同而有变化。在酶液中加入适量的变化。

33、在酶液中加入适量的CaClCaCl2 2和和KHKH2 2POPO4 4作作为原生质体稳定剂，可增强质膜的稳定性。为原生质体稳定剂，可增强质膜的稳定性。o3.3.取材植株的生理状态也是重要的因素，如取材植株的生理状态也是重要的因素，如采用悬浮培养的细胞一般用继代采用悬浮培养的细胞一般用继代3d3d的较为理的较为理想。想。四四.培养原生质体的几种方法培养原生质体的几种方法 o原生质体经分离和纯化后，需要进行活力测原生质体经分离和纯化后，需要进行活力测定和计数。原生质体培养时有一种密度效应，定和计数。原生质体培养时有一种密度效应，一般一般10104 45 5个个/mL/mL有利于培养。计数可用血球

34、计有利于培养。计数可用血球计数板进行。数板进行。Brassica protoplastsThe optimum plating efficiency(tobacco protoplasts)5104 protoplasts/cm3.Protoplasts fail to divide when plated at one tenth of this concentration 液体浅层培养液体浅层培养o将含有原生质体的培养液在培养皿底部铺一薄层，封将含有原生质体的培养液在培养皿底部铺一薄层，封口后进行培养。口后进行培养。o优点：操作简单，对原生质体的操作小，且易于添加优点：操作简单，对原生质体

35、的操作小，且易于添加新鲜培养基和转移培养物。新鲜培养基和转移培养物。o缺点：使原生质体分布不均匀，常常发生原生质体之缺点：使原生质体分布不均匀，常常发生原生质体之间的粘连现象而影响其进一步的生长和发育。此外，间的粘连现象而影响其进一步的生长和发育。此外，难以跟踪观察某一个细胞的发育情况。难以跟踪观察某一个细胞的发育情况。固体平板培养固体平板培养o固体培养也就是琼脂瑭包埋培养。低融点的琼脂糖可固体培养也就是琼脂瑭包埋培养。低融点的琼脂糖可在在3030左右融化与原生质体混合而不影响原生质体的左右融化与原生质体混合而不影响原生质体的生命活动。混合后的含有原生质体的培养基铺于培养生命活动。混合后的含有

36、原生质体的培养基铺于培养皿底部，封口后进行培养。皿底部，封口后进行培养。o优点：可以跟踪观察单个原生质体的发育情况，易于优点：可以跟踪观察单个原生质体的发育情况，易于统计原生质体分裂频率。统计原生质体分裂频率。o缺点：操作要求严格，尤其是混合时的温度掌握必须缺点：操作要求严格，尤其是混合时的温度掌握必须合适，温度偏高则影响原生质体的活力，温度偏低则合适，温度偏高则影响原生质体的活力，温度偏低则琼脂糖凝固太快，原生质体不易混合均匀。琼脂糖凝固太快，原生质体不易混合均匀。液体固体双层培养液体固体双层培养o即在培养皿的底部铺一层琼脂糖固体培养基，即在培养皿的底部铺一层琼脂糖固体培养基，再将原生质体悬

37、浮液滴于固体培养基表面。再将原生质体悬浮液滴于固体培养基表面。o优点：固体培养基中的营养物质可以缓慢释放优点：固体培养基中的营养物质可以缓慢释放到液体培养基中，如果在下层固体培养基中添到液体培养基中，如果在下层固体培养基中添加一定量的活性炭，则还可以吸附培养物产生加一定量的活性炭，则还可以吸附培养物产生的一些有害物质，促进原生质体的分裂和细胞的一些有害物质，促进原生质体的分裂和细胞团的形成。团的形成。o缺点：不易观察细胞的发育过程。缺点：不易观察细胞的发育过程。琼脂糖珠培养琼脂糖珠培养o将含有原生质体的液态琼脂糖培养基用吸管以将含有原生质体的液态琼脂糖培养基用吸管以大约大约5050微升一滴的量

38、滴于直径微升一滴的量滴于直径6cm6cm的培养皿，待的培养皿，待其固化后向其中添加其固化后向其中添加3ml3ml液体培养基并于摇床上液体培养基并于摇床上低速旋转培养。培养过程中，通过调整液体培低速旋转培养。培养过程中，通过调整液体培养基的渗透压来调节培养物的渗透压以利于其养基的渗透压来调节培养物的渗透压以利于其进一步的生长和发育。这种方法由于改善了培进一步的生长和发育。这种方法由于改善了培养物的通气和营养环境，从而促进了原生质体养物的通气和营养环境，从而促进了原生质体的分裂和细胞团的形成。的分裂和细胞团的形成。第五节第五节 通过花药获取花粉粒通过花药获取花粉粒o花粉的分离有二种方法，即花药漂浮

39、培养自然释放花粉的分离有二种方法，即花药漂浮培养自然释放法和机械分离法。法和机械分离法。o（1 1）花药漂浮培养自然释放法：把花药接种在液）花药漂浮培养自然释放法：把花药接种在液体培养基上，花药漂浮于液体表面经体培养基上，花药漂浮于液体表面经1 17 7天的培养，天的培养，药壁自然开裂，花粉自然散落下来，及时将花药壁药壁自然开裂，花粉自然散落下来，及时将花药壁从培养瓶中取出来，留下的花粉继续培养，如水稻、从培养瓶中取出来，留下的花粉继续培养，如水稻、大麦等。大麦等。o（2 2）机械分离方法）机械分离方法o分离：分离：把花药放在玻璃容器中，加入一定量适当浓度的蔗糖溶液把花药放在玻璃容器中，加入一

40、定量适当浓度的蔗糖溶液或适量液体培养基，用注射器内径轻轻挤压花药把花粉挤出来，或或适量液体培养基，用注射器内径轻轻挤压花药把花粉挤出来，或用磁力搅拌器把花药搅裂使花粉散出来。用磁力搅拌器把花药搅裂使花粉散出来。o过筛：过筛：将上述混合液经过一定孔径的不锈钢网或尼龙网过滤。一将上述混合液经过一定孔径的不锈钢网或尼龙网过滤。一般孔径应比花粉直径大般孔径应比花粉直径大10um10um左右，将滤液离心，去上清液。左右，将滤液离心，去上清液。o清洗：清洗：加入蔗糖液或液体培养，置加入蔗糖液或液体培养，置10010010001000转转/分离心分离心1 15 5分钟，分钟，再去上清液，如此重复再去上清液，如此重复2 23 3次。最后一次用需用培养花粉的液体培次。最后一次用需用培养花粉的液体培养基进行，以保证培养基成分的稳定性。培养时花粉的密度一般为养基进行，以保证培养基成分的稳定性。培养时花粉的密度一般为10104 410105 5个个/ml/ml。谢谢观看