1、WESTERN BLOTTING过程图解 1ppt课件 当水和胶之间有一条折射线时，说明胶已凝了。再等3min使胶充分凝固就可倒去胶上层水并用吸水纸将水吸干。按前面方法配4的浓缩胶,加入TEMED后立即摇匀即可灌胶。将剩余空间灌满浓缩胶然后将梳子插入浓缩胶中。灌胶时也要使胶沿玻璃板流下以免胶中有气泡产生。2ppt课件 梳子已经插好。插梳子时要使梳子保持水平。由于胶凝固时体积会收缩减小，从而使加样孔的上样体积减小，所以在浓缩胶凝固的过程中要经常在两边补胶。3ppt课件 浓缩胶干后，用手拿住梳子的两边均匀用力，拔起梳子4ppt课件 将玻璃板从夹子上取下，用水冲一下5ppt课件将玻璃板放入电泳槽中。
2、小玻璃板面向内，大玻璃板面向外 6ppt课件插入另一块玻璃板，也是小玻璃板面向内，大玻璃板面向外。若只跑一块胶，那槽另一边要垫一块塑料板且有字的一面面向外 7ppt课件 两块玻璃板都放好后夹紧（拇指按下夹子）8ppt课件 放入电泳槽中9ppt课件向内槽中加电泳缓冲液，如果不漏，在向外槽中加，如果漏，就要重新把玻板查好，使内外不交通。电泳液至少要漫过内侧的小玻璃板。10ppt课件 测完蛋白含量后，所有蛋白样品调至等浓度后上样。取出上样样品至0.5ml离心管中，加入5SDS 上样缓冲液至终浓度为1。（上样总体积一般不超过15l，加样孔的最大限度可加20l样品。）上样前要将样品于沸水中煮5min使蛋
3、白变性。加足够的电泳液后开始准备上样。用微量进样器贴壁吸取样品，将样品吸出不要吸进气泡。将加样器针头插至加样孔中缓慢加入样品。（加样太快可使样品冲出加样孔，若有气泡也可能使样品溢出。加入下一个样品时，进样器需在外槽电泳缓冲液中洗涤3次，以免交叉污染11ppt课件电泳时间一般1-2 h，电压为100V较好，也可用60V。电泳至溴酚兰刚跑出即可终止电泳。12ppt课件 取出转移槽13ppt课件 取下玻璃板14ppt课件 两块玻璃板都已经取下15ppt课件要先将玻璃板撬掉才可剥胶，撬的时候动作要轻，要在两个边上轻轻的反复撬。撬一会儿玻璃板便开始松动，直到撬去玻板。（撬时一定要小心，玻板很易裂。）16
4、ppt课件 将浓缩胶（浓缩胶影响操作）和分离胶上不用的部分切去17ppt课件在加有转移液的搪瓷盘里放入转膜用的夹子、两块海绵垫、一支玻棒、滤纸和浸过的膜，将夹子打开使白的一面保持水平。在上面垫一张海绵垫，用玻棒来回擀几遍以擀走里面的气泡。18ppt课件在垫子上垫三层滤纸（可三张纸先叠在一起在垫于垫子上），一手固定滤纸一手用玻棒擀去其中的气泡。依次加膜、加胶，再在膜上盖3张滤纸并除去气泡。19ppt课件最后盖上另一个海绵垫，擀几下就可合起夹子。整个操作在转移液中进行，要不断的擀去气泡。膜两边的滤纸不能相互接触，接触后会发生短路。转移液含甲醇，操作时要戴手套，实验室要开门以使空气流通。20ppt课
5、件 合起夹子21ppt课件将夹子放入转移槽中，要使夹的黑面对槽的黑面，夹的白面对槽的红面。22ppt课件 电转移时会产热，在槽的一边放一块冰来降温。23ppt课件 加上转移缓冲液24ppt课件 盖上盖子,放入乘有水的水槽中,水槽中加冰袋25ppt课件 电转移200mA 2-3h后，打开盖子，取出夹子26ppt课件打开夹子，取出膜，如果所用marker是预染marker,可见marker已经转移到膜上,如果不是预染marker，可以把膜转完后将膜用1丽春红染液染5min，于脱色摇床上摇，然后用水冲洗掉没染上的染液就可看到膜上的蛋白。将膜晾干备用。27ppt课件 将膜用TBS从下向上浸湿后，移至含有封闭液的平皿中 28ppt课件 室温下脱色摇床上摇动封闭1h。29ppt课件 按所需稀释浓度滴加一抗（直接加在封闭液里）4 过夜或37 3h。30ppt课件 第二天取出膜，用TBST洗三次每次10min，然后加入TBS液中，按稀释浓度滴加二抗。室温孵育1h,再用TBST洗三次每次10min。最后DAB显色或者化学发光法显影。31ppt课件
